Тетраселмис разведение

Tetraselmis является родом фитопланктона . Tetraselmis зеленый водорослей родапределах порядка Chlorodendrales, и они характеризуются их интенсивным зеленым цветом хлоропласта, их жгутиковых клеточных тела, в присутствии пиреноида внутри хлоропласта и масштаб производства дуральной стенки. Видыпределах этого рода встречаются в морских и пресноводных экосистем по всему миру; диапазон их обитания в основном ограничивается глубиной воды изза их фотосинтетической природы. Таким образом, они живут в различных водных средахесли достаточноепитательных веществ и свет для чистой фотосинтетической активности. Tetraselmis виды оказались полезными как для научных исследований и промышленности. Tetraselmis виды были изучены для понимания темпов роста планктона, а недавно колониальные виды колонии используютсячтобы получить понимание эволюции многоклеточности. Кроме того, многие видынастоящее время изучаются для их использованиякачестве биотоплива изза их высокое содержание липидов.

содержание

история

Название рода впервые был представлен научному сообществу в Германии в 1878 году Ф. фон Штейн. Род Tetraselmis претерпел много таксономических изменений на протяжении многих лет, в основном из – за более совершенные методы исследований , которые помогли ученым в их классификации. Многие ботаники еще больше способствовали знаниям окружающих Tetraselmis , и обнаружили множество видов в пределах родов. Некоторые известные авторы включают RW Butcher, Т. Хорь, RE Норрис, М. Chihara.

Место и экология

Tetraselmis виды встречаются в морских и пресноводных экосистемах, и они занимают ниши в качестве первичных производителей в бентосных и планктонных пищевых цепочках. Они могут быть найдены во многих мировых водах, и их основной силовика диапазона обитания светого наличие которых ограничивает клетку фотической зоны в толще воды. Первичные производители водных экосистем в основном одноклеточные фотосинтетический планктон, который включает в себя Tetraselmis . Планктонные фотоавтотрофы являются важными компонентами водных пищевых цепочек , поскольку они образуют первый трофический уровень. Большинство Tetraselmis видов свободно живущий, однако, некоторые виды симбионтов в пределах животных. Морские виды часто заселяют быстро и плотно, в результате чего планктона в береговых и лавровых районах. Tetraselmis имеет специфический важный род для изучения и понимания динамики темпы роста планктона.

морфология клеток

Tetraselmis видов сильно различаются по размеру и форме клеток. Клетки могут быть круглыми, яйцевидные, эллиптические, сплюснутые, сжатый, или сочетание этих форм, в которых их длины сторон может изменяться в диапазоне от 3.5-25 мкм. Tetraselmis клетки имеют четыре жгутика одинаковой длины, которые возникают из депрессии вблизи вершины. В большинстве видов, жгутики появляются парами и проецировать друг от друга. Как правило, отдельные клетки перемещаются в линейной форме в течение длительного периода времени, а затем быстро изменить направление без остановки, в котором их жгутики генерируют силу для движения через водную среду. Смотрите рисунок 1 для общих черт жгутиков и клеток тела Tetraselmis видов.

У них есть один большой хлоропласты, как правило, с четырьмя передними долями, занимающей большую часть цитоплазмы отсека. Некоторые виды не сократили или нет лепестка, и некоторые из них разработали задние лопасти. Как и в других зеленых водорослях родов, тилакоиды и ламель не имеют заданное количества или узора внутри хлоропласта. Хлоропласт содержит один пиреноид, который окруженный в крахмальной-оболочке, и один глазковую пятнистость. Пиреноид обычно центральный внутри клетки; расположение рыльца однако, варьируется от видов в основном из-за размера и формы клеток. Клеймо состоит из двух липидных-гранулы слоев, разделенных одной тилакоидов, которые параллельны хлоропласт мембраны. Рыльца являются концентрацией гранул пигмента, который клетка использует для обнаружения света позволяет им ориентироваться в толще воды. Как пиреноид и клеймо могут быть использованы для таксономической классификации из-за их надежное и присущее позиционирование видов. Смотрите рисунок 1 для визуального представления позиции хлоропластов, стигмы, пиреноид и жгутики депрессии.

Ядро клетки находится между передними долями хлоропластов параллельно с пиреноидом, а некоторые виды разработали передний ядерный лепесток. Ядро в центре и параллельно с жгутиками депрессией и пиреноидом. Кроме того, загущенные хроматина можно рассматривать в ядре некоторых видов. На рисунке 1 позиционировании ядра внутри клеток. Гольджи из Tetraselmis видов имеет различные количества Гольджи органов , как правило , в диапазоне 2-4, но виды могут иметь до 8 или более. Это надежная характеристика , которая используется , чтобы помочь классифицировать виды. Гольджи тела лежит между хлоропластами и базальными органами; цис-Гольджи сталкивается хлоропласты и транс-Гольджи сталкиваются базальные тела. Митохондрии рассеяны по всей цитоплазме без образца. Цитоплазма может содержать дополнительные органеллы и макромолекулы , такие как липидные капель, вакуоль и лизосому. Кроме того, крахмал получают путем Tetraselmis такой же , как те , производится из наземных растений.

Теки большинства видов тесно охватывает тело клетки, но может стать отделенными из – за нарушения в форме клеток. Тека, как правило , гладкая, но некоторые виды разработали различные складки , которые пересекают перпендикулярно вблизи клетки апекса, давая клетку внешнего вида разделяются на четыре продольные секции. Некоторые виды также имеют закрученные кзади клетки , который отражал в дуральной стенке производства. Только перфорация теки, где жгутики возникают, которая называется апикальной депрессии. Пор длинная щель с дуральными расширениями , которые граничат его, проходящие вверх , чтобы защитить жгутики базы. В клетках, утративших жгутики дурального расширения растут слитом, но они этого не делают предохранитель; неподвижные клетки Tetraselmis имеют жгутиковые корешки , которые остаются в пределах дурального отсека. Кроме того, многие виды имеют толстые фигурные волосы прикреплены к клеточной стенке вблизи основания жгутика. Волоски перекрестно полосатые и имеют спиральный узор, который похож на жгутиковые волоски, но они толще и длиннее , чем жгутиковые волоски. Производство Шкала начинается во время профазы, и весы приводят к клеточной мембране сразу же после завершения цитокинеза и две дочерние клетки отделяют. Слияние весов происходит снаружи и начинается вблизи заднего конца, простираясь вперед к переднему концу , в котором жгутиковых щели форме последним.

Каждая ячейка имеет четыре жгутики одинаковой длины, в которых жгутики короче , чем длина ячейки. Жгутиков выйти из апикальной депрессии в пар и точки в противоположных направлениях, идущей параллельно длинной стороне ячейки. Из – за их выход из глубокой депрессии, механическая сила жгутиков могут производить ограничена. Другие клоны с не-депрессивными жгутиковыми вставками могут производить более высокие количества жгутиков силы, потому что жгутиковая база не геометрический ограниченная. Жгутики из Tetraselmis видов толстых, покрыты материалом слизистой, и имеют тупой конец. Они также покрыты жгутиковые волоски , которые слабо прикрепленных к наружной части клетки; они поперечно-полосатая с двумя слоями на шкале жгутиков. Смотрите рисунок 3 для детальной картины жгутиков , включая их чешуйки и волосы. Внутренний слой компактно и плотно охватывает жгутики, и клетки волос прикреплены к клеточной мембране с помощью небольших участков мембраны, которые не покрываются за счет формирования рисунка. Внешний масштаб слой выполнен из небольших круглых шкал , которые в основном используются для перекрытия голой мембраны не покрывается внутренними чешуйками. Внутренние чешуйки крупнее , чем наружные чешуи, и обычно напоминает пятиугольник или квадратная форма. Смотрите рисунок 1 для обобщенного рисунка жгутиковых шкал. Флагеллярные волосы имеют четкую последовательность структурных компонентов, проксимальная нить соединяет жгутик и клеточную поверхность, за этим следует трубчатому вал, а затем переходная зона , в которой изменяются вал, за которым следует участок линейных глобулярных субъединиц и волосы заканчивается дистальной нити. Дистальные нити и переходная зона являются единственными компонентами, которые не производятся некоторыми видами. Жгутиковых волосы имеют фиксированное количество дистальных субъединиц повторов, которая варьируется между 2-44 субъединиц в зависимости от вида. Таким образом, жгутиковые волосы являются хорошим инструментом для морфологического сравнения видов и классификации. Рисунок 1 включает в себя эти волоски на чертеже жгутиков. Виды использовать их жгутики путешествовать по прямой линии, вращаясь вдоль их оси, в которой они путешествуют в одном направлении на большие расстояния , а затем резко менять направление мгновенно без остановки. Некоторые виды отличаются от этой модели движения и двигаться в менее жесткой и структурированной форме.

Спасательные этапы

Tetraselmis видов имеют три стадии жизни , которая включает в себя жгутиковые стадии, вегетативные неподвижные стадии и стадию кисты. Растительная не-подвижна стадией является доминирующей жизнью стадией большинства видов. Только структурное различие между жгутиковой и вегетативной стадией этого количеством слоев в масштабе дуральной стенки; жгутиковых стадия только когда – либо имеет один слой, в то время как вегетативное состояние имеет два или более. Клетки в стадии цист теряют жгутики, и называются как aflagellate, и они производят густую дуральную-оболочку для защиты. Во время любого из этапов жизни можно для Tetraselmis видов пройти полную трансформацию и развитие жгутиков, став подвижны.

Tetraselmis виды претерпевают деление клеток в течение не-мотильных стадии, производя две дочерние клетки, и большинство видов только пройти один цикл деления. Во время деления клетки, органеллы разделить синхронно до того ядерного деления. Деление клеток облегчаются с помощью фикопласта, что микротрубочки структура , которая помогает клетке разделить ядра в каждую дочернюю клетку. Дочерние клетки могут развиться в жгутиковые клетки или остаются неподвижными, в зависимости от условий окружающей среды. Кроме того, вегетативные клетки ли жгутиконосец или неподвижным прикреплены к дуральной стене с помощью четыре микротрубочек точек контакта.

Практическая значимость

Tetraselmis виды имеют важное значение для клеточной биологии исследований, для изучения циклов роста планктона, и они могут иметь будущее использование в производстве биотоплива. Так , например, вид Т. индик используется для того чтобы изучить , как асимметричное деление клеток во время митоза результатов в клональной клеточной гетерогенности. Этот вид образует клональную колонию , в которой клетки морфологически и ультраструктурным разные, и многие клетки специализируются и развивать независимые физические свойства. Асимметричное деление дочерних клеток приводит к неравному разделению обоих цитоплазме и нуклеоплазме. Ученые полагают , что это явление позволяет клоны сформировать «субпопуляции» , которые остаются близко друг к другу, в котором клетки взаимодействуют друг с другом и действовать как одно большое население. Асимметричное деление клеток явно играет важную роль в производстве фенотипически различных клеток в многоклеточных системах, и это имеет важное значение для многоклеточных организмов, включая человека.

Tetraselmis и другие виды микроводорослей используются в пищу в области аквакультуры, а также для биотехнологических целей. Tetraselmis видов, наряду с другими микроводорослями являются перспективным источником для использования биотоплива в связи с их высокой скоростью роста, высоким содержанием липидов, более дешевые механизмы фотосинтеза, меньше потребности в сельскохозяйственных землях, полезный побочными продуктами, а также для защиты окружающей среды. Исследования в настоящее время осуществляются в конкретные виды микроводорослей для использования биотоплива. «Tetraselmis имеет очень высокий уровень липидов; их аминокислоты стимулируют кормление морских организмов.

Дополнительная информация

Tetraselmis зеленого цвета, подвижны и обычно растет 10 мкм длиной х 14 мкм в ширину. Вида Т. convolutae является симбионтом из acoelomate животных Symsagittifera roscoffensis (а также может свободно жить в океане).

Леонид Картамышев 3 лет назад Просмотров:

1 44 ISSN Бюлетень ДНБС Вип. 108 УДК : Т.М. НОВИКОВА; А.Б. БОРОВКОВ, кандидат биологических наук Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского НАНУ, г. Севастополь УПРАВЛЕНИЕ ИНТЕНСИВНОЙ КУЛЬТУРОЙ TETRASELMIS VIRIDIS ПЛОТНОСТАТНЫМ МЕТОДОМ Экспериментально определена динамика роста микроводоросли Tetraselmis viridis в плотностатном режиме культивирования. Установлена зависимость удельной скорости роста T. viridis от плотности культуры. Проведена апробация простейшей математической модели динамики плотности культуры микроводоросли для режима плотностата на примере T. viridis. Выявлена плотность культуры, которая обеспечивает максимальную удельную скорость роста исследуемой культуры микроводоросли. Ключевые слова: Tetraselmis viridis, плотностат, математическая модель, управление ростом. Введение Продукты из микроводорослей эффективно применяются в качестве кормовых добавок в животноводстве и марикультре, широко используются в парфюмерии, медицине, пищевой промышленности [4, 10]. Водоросли служат источником растительного белка, витаминов, антиоксидантов, полиненасыщенных жирных кислот, препаратов бактерицидного действия, иммуностимулирующих соединений и других веществ. Известно, что на разных стадиях роста культуры биохимический состав клеток микроводорослей меняется. Знание данных закономерностей при интенсивном культивировании водорослей позволит получать максимальное содержание заданного биохимического компонента (белок, углеводы, липиды и т.д.) [2]. На сегодняшний день разработано несколько способов управления ростом культуры: накопительный, непрерывный, непропорционально-проточный, квазинепрерывный. Одним из наиболее редко применяемых, однако наиболее перспективным, является плотностатный метод, при котором плотность культуры (биомасса или число клеток) и, соответственно, световые условия в суспензии поддерживаются на заданном уровне [6]. Использование данного метода позволяет изучать влияние одного из факторов, стабилизируя влияние других, и одновременно обеспечивает высокие скорости роста водорослей. Вид Tetraselmis viridis широко известен как классический кормовой объект в аквакультуре и как перспективный источник полиненасыщенных жирных кислот в биотехнологии [3]. А внедрение в практику существующих теоретических разработок по управлению ростом культуры микроводорослей позволит получать культуры с заданными ростовыми и биохимическими характеристиками. Цель работы: апробировать простейшую математическую модель для описания динамики плотности культуры Tetraselmis viridis в плотностатном режиме культивирования. Объекты и методы исследований В эксперименте использовалась альгологически чистая культура зеленой жгутиковой микроводоросли Tetraselmis viridis Rouch (syn. Platimonas viridis ) штамм IBSS-25 из коллекции Института биологии южных морей им. А.О. Ковалевского НАНУ. Методами накопительных и квазинепрерывных культур [7, 8] водоросль T. viridis выращивалась на питательной среде Тренкеншу [5]. Для еѐ приготовления использовали стерильную морскую воду. Предварительно культура, взятая из

2 ISSN Бюлетень ДНБС Вип коллекции, была адаптирована к экспериментальным условиям. Выращивали еѐ в стеклянных культиваторах плоскопараллельного типа шириной 5 см и объемом 3000 мл [9]. Этот объем поддерживали на протяжении всего эксперимента, доливая перед измерениями дистиллированную воду до отметки 3 л. Эксперимент проводился на люминостате с лампами ЛБ-40, которые давали среднюю поверхностную освещенность для каждого из реакторов 15 клк. Температуру стабилизировали на уровне С. В процессе выращивания культуру непрерывно барботировали газо-воздушной смесью с 3% по объему углекислого газа с помощью компрессорной установки. Оптическую плотность при длине волны 750 нм использовали как косвенный показатель биомассы водорослей. Измерения проводили с помощью фотоэлектроколориметра КФК-2 в кювете 0,5 см. Переход от единиц оптической плотности (D750) к величине сухой массы (СВ биомасса высушена при 105 С) осуществляли посредством эмпирического коэффициента k, равного 0,8 г-л -1 ед. опт. пл – 1 ; CB = k х D750 [1]. Удельная скорость роста микроводоросли рассчитана с помощью выражения: биомасса в начале лог-фазы t ln [6]. Где B ln биомасса в начале лог-фазы t ln [6]. Результаты и обсуждение На начальном этапе эксперимента микроводоросль T. viridis выращивали накопительным методом. В культиватор вносили инокулят и питательную среду в такой пропорции, чтобы начальная плотность культуры составила 0,1 г/л СВ (рис. 1). Время, ч. Рис.1. Динамика плотности накопительной культуры T. viridis На пятые сутки, когда плотность культуры достигла 1 г/л, культура была переведена в непрерывный режим культивирования с рабочими плотностями от 0,4 до 1,0 г/л. Каждые 24 часа рассчитывали удельную скорость протока среды в зависимости от текущей скорости роста культуры T. viridis. Через 2-3 суток на каждом из этапов эксперимента плотность культуры стабилизировалась на заданном уровне.

3 46 ISSN Бюлетень ДНБС Вип. 108 Необходимо отметить хорошее теоретическое обоснование механизмов управления ростом микроводорослей в культуре, которое позволяет не только выявить зависимость характеристик роста от того или иного параметра внешней среды, но и формализовать закономерности с помощью относительно простых математических уравнений [7]. На сегодняшний день применяются следующие виды непрерывных культур микроводорослей: хемостат и турбидостат (плотностат). Одним из принципиальных, и, одновременно, очень важных отличий хемостата и турбидостата является возможность получения в турбидостате устойчивого экспоненциального роста клеток микроводорослей без лимитирования элементами минерального питания, что невозможно при хемостатном способе культивирования. То есть в турбидостате можно исследовать в чистом виде влияние главного фактора, определяющего рост микроводорослей, – световых условий, в которых растут клетки. Данный метод также полезен при изучении субстратзависимого роста, так как стабилизация плотности позволяет проводить исследования при неизменных световых условиях. Это дает возможность строго контролировать влияние на рост других факторов среды и выделить факторы, даже незначительно влияющие на рост, например, при оптимизации микроэлементного состава питательной среды для морских микроводорослей [8]. А Б В Г Время, сут. Рис. 2. Динамика роста T. viridis в плотностатном режиме культивирования.

4 ISSN Бюлетень ДНБС Вип А общая динамика с 1-х по 61-е сутки; стационарная плотность культуры: Б 0,6 мг/мл, В 0,9 мг/мл, Г 1,0 мг/мл. Пунктирные линии и маркеры -экспериментальные данные, сплошные линии расчет по уравнению модели [8] Для описания роста культуры использовали подход, предложенный Р.П. Тренкеншу [8]. Разработанная автором математическая модель позволяет прогнозировать динамику плотности культуры и эффективно управлять ростом T. viridis: В = В 0 ехр µ(t-t0), где В 0 – начальная биомасса клеток микроводорослей, мг/мл, ц – удельная скорость роста культуры, сут -1. На рисунке 2 показано, что модель хорошо описывает рост водоросли T. viridis и позволяет получать культуру с заданной плотностью. В эксперименте культуру стабилизировали на семи уровнях плотности: от 0,4 до 1,0 мг/мл. На рис. 2А показана динамика плотности культуры на протяжении всего эксперимента. Для наглядностиболее подробно приведены три этапа выращивания культуры тетраселмиса в плотностате. На этих графиках представлены экспериментальные и расчетные данные, которые имеют высокую сходимость. Модель также позволяет рассчитать для режима плотностата удельные скорости роста культуры, которые характерны для каждой из заданных плотностей культуры. В таблице 1 представлены рассчитанные удельные скорости роста культуры T. viridis в зависимости от заданной плотности культуры. Заметим, что с ростом плотности культуры, а, следовательно, и с понижением облученности клеток – удельная скорость роста микроводоросли снижается. Из многочисленных литературных источников известно, что величина удельной скорости в экспоненциальной фазе роста определяется, в основном, световыми условиями, которые для низких плотностей культуры неизменны [5, 8]. Сравнение удельных скоростей роста T. viridis относительно плотности культуры показывает, что при низких плотностях культур, когда еѐ рост не ограничен минеральным обеспечением, удельная скорость роста максимальна; впоследствии при дальнейшем повышении плотности культуры удельные скорости роста снижаются, достигая минимальных значений при максимально возможной для данных условий плотности культуры (табл. 1).

5 48 ISSN Бюлетень ДНБС Вип. 108 Зависимость удельной скорости роста T. viridis от плотности культуры Дни эксперимента, сутки СВ, мг/мл µ m сут -1 0,4 ± 0,01 0,52 ± 0,02 0,5 ± 0,02 0,41 ± 0, ,6 ± 0,01 0,36 ± 0,01 Таблица ,7 ± 0,02 0,34 ± 0, ,8 ± 0,02 0,32 ± 0, ,9 ± 0,01 0,28 ± 0, ,0 ± 0,03 0,24 ± 0,02 Таким образом, для получения культуры T. viridis с максимальными удельными скоростями роста плотность культуры должна находиться в пределах 0,4 г/л СВ или ниже, что соответствует логарифмической стадии роста (рис. 1). Выводы 1. Апробация простейшей математической модели динамики плотности культуры микроводоросли для режима плотностата на примере T. viridis показала высокую эффективность описания ею динамики роста микроводорослей в непрерывном режиме культивирования. 2. При повышении плотности культуры T. viridis в плотностате удельные скорости роста микроводоросли снижаются. 3. Для получения культуры T. viridis с максимальными удельными скоростями роста плотность культуры должна находиться в пределах 0,4 г/л СВ или ниже, что соответствует логарифмической стадии роста. 4. Список литературы 1. Боровков А. Б. Продуктивность Spirulinaplatensis и Tetraselmis viridis при использовании различных методов культивирования / А. Б. Боровков, Р. Г. Геворгиз // Экология моря Вып. 70. C Ладыгина Л. В. Интенсивность роста и биохимический состав микроводоросли Dunaliella viridis Теоd. в зависимости от условий культивирования / Л. В. Ладыгина // Экология моря Вып. 67. С Ладигіна Л. В. Мікроводорості як кормові об’єкти личинок мідій та устриць : автореф. дис. на здобуття наук. ступеня канд. біол. наук : спец «Гідробіологія» / Л. В. Ладигіна. Севастополь, с. 4. Тренкеншу Р. П. Одноклеточные водоросли: массовое культивирование и практическое использование / Р. П. Тренкеншу // Прикладная альгология С Тренкеншу Р. П. Ростовые и фотоэнергетические характеристики

6 ISSN Бюлетень ДНБС Вип морских микроводорослей в плотной культуре: автореф. дисс. канд. биол. наук. : спец «Биофизика» / Р. П. Тренкеншу Красноярск, с. 6. Тренкеншу Р. П. Культура микроводорослей как модельный объект в гидроэкологии / Р. П. Тренкеншу // Морской экологический журнал Т. 8, Вып. 4. C Тренкеншу Р. П. Простейшие модели роста микроводорослей 1. Периодическая культура / Р. П. Тренкеншу // Экология моря Вып. 67. C Тренкеншу Р. П. Простейшие модели роста микроводорослей. 2. Квазинепрерывная культура / Р. П. Тренкеншу // Экология моря Вып. 67. C Тренкеншу Р. П. Унифицированная лабораторная установка для исследования низших фототрофов. / Р. П. Тренкеншу, А. Б. Боровков, А. С. Лелеков Севастополь, ОЦ НАНУ, с. – (Препринт / НАН Украины, ОЦ НАНУ) 10. Zilberman D. Algolculture. / D. Zilberman, M. Caswell Department of Agricultural and Resource Economies, University of California at Berkeley, р. Статья поступила в редакцию г. T.M. NOVIKOVA, A.B. BOROVKOV A.O. Kovalevsky Institute of Biology of the Southern Seas NASU, Sevastopol, Ukraine CONTROL OF THE TETRASELMIS VIRIDIS HIGH-DENSITY CULTURE USING THE TURBIDOSTAT METHOD The approbation of the simplest mathematical model of the dynamics of microalgae culture density for turbidostat regime was carried out for example of Tetraselmis viridis. The high efficiency of the proposed model describing the dynamics of algae growth was defined in a continuous regime of cultivation. It was shown experimentally that to get culture T. viridis with a maximum specific growth rate the culture density must be within 0.4 g N l-1 or less, that corresponds to the exponential growth phase. Т.М. НОВІКОВА, А.Б. БОРОВКОВ Інститут біології південних морів ім. О.О. Ковалевського НАНУ, м. Севастополь, Україна УПРАВЛІННЯ ІНТЕНСИВНОЮ КУЛЬТУРОЮ TETRASELMIS VIRIDIS ПЛОТНОСТАТНИМ МЕТОДОМ Апробація найпростішої математичної моделі динаміки щільності культури мікроводорості для режиму плотностата на прикладі Tetraselmis viridis показала високу ефективність опису нею динаміки росту мікроводорості в безперервному режимі культивування. Експериментально показано, що для отримання культури T. viridis з максимальними питомими швидкостями росту щільність культури повинна перебувати в межах 0,4 г СВ-л -1 або нижче, що відповідає логарифмічній стадії росту.

7 50 ISSN Бюлетень ДНБС Вип. 108 Т.М. НОВИКОВА, А.Б. БОРОВКОВ Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского НАНУ, г. Севастополь, Украина УПРАВЛЕНИЕ ИНТЕНСИВНОЙ КУЛЬТУРОЙ TETRASELMIS VIRIDIS ПЛОТНОСТАТНЫМ МЕТОДОМ Апробация простейшей математической модели динамики плотности культуры микроводоросли для режима плотностата на примере T. viridis показала высокую эффективность описания ею динамики роста микроводорослей в непрерывном режиме культивирования. Экспериментально показано, что для получения культуры T. viridis с максимальными удельными скоростями роста плотность культуры должна находиться в пределах 0,4 г СВ-л -1 или ниже, что соответствует логарифмической стадии роста.

Tetraselmis
Tetraselmis Suecica
Научная классификация
Тип:	Chlorophyta
Учебный класс:	Chlorodendrophyceae
Порядок:	Chlorodendrales
Семья:	Chlorodendraceae
Род:	Tetraselmis F.Stein, 1878
вид